Anipill®核心體溫膠囊是一款可連續(xù)監(jiān)測、記錄并無線傳輸核心體溫信號的微型膠囊。

適用動物及使用方式：小動物（大小鼠）可進行皮下或腹腔植入；中大型動物（比格犬、兔子、豬等）可選擇皮下或腹腔植入，也可經口腔攝入進入體內，通過胃、腸道，最后由排出。使用簡單方便，廣泛用于小動物以及中大型動物的核心體溫監(jiān)測。

ANIMALS MONITORING的動物核心體溫膠囊包括：Anipill膠囊和Anilogger檢測儀。

Anipill膠囊用于植入（或吞服入）動物體內，采集動物的核心體溫；膠囊通過無線信號傳輸，將采集到的體溫信息傳輸給Anilogger監(jiān)測儀，進行顯示和讀取，是款式高精度的核心體溫采集設備。

應用于體溫調節(jié)研究、感染學、生物節(jié)律分析、動物休眠、免疫和疫苗開發(fā)、毒理學研究等加強對實驗動物的體溫監(jiān)測?？梢赃B續(xù)的收集可靠和準確的核心溫度數據, 同時保持小動物的舒適性和可移動性等正常生理狀態(tài)。

Anipill膠囊適用于多種動物，如：大鼠、小鼠、比格犬、兔子等。

體溫膠囊的主要特點：

·膠囊體積小巧，可口服（視動物大小而定）或植入使用，使用簡單，對動物友好；

·無線無導管測量，測試對象亦無需實時佩戴監(jiān)測器，實現無任何限制測量方案；

·監(jiān)測器可同時監(jiān)測 8 枚膠囊數據，且自身可最多 7 臺并聯，實現測量高通量；

·膠囊內置存儲記憶功能，可存儲多達 2000 組數據，無需擔心數據丟失；

·基于遙測技術，實時連續(xù)的核心溫度監(jiān)測。

主要技術參數：

 測量參數：適用溫度25-45℃，精確度0.02℃，采樣頻率30Hz（可設定），內部可存儲2000組數據；

 傳輸參數：傳輸距離1-3m，傳輸頻率433Hz；

 使用壽命：20天

 規(guī)格參數：17.7*8.9mm，重1.7g；

 可同時監(jiān)測并顯示8只動物體內膠囊的傳輸，并可通過PC/MAC觀察分析；

 每臺監(jiān)測器可存儲150,185組數據；

應用1：體溫調節(jié)研究

在四只食蟹猴的腹腔分別植入膠囊，然后把它們與其他未植入的食蟹猴在標準條件下共同飼養(yǎng)。在接下來的一周內，每隔15分鐘測量一次體溫，實驗結果如圖。本實驗說明，Anipill系統可以用來連續(xù)、可靠地測量非人靈長類的體溫，并且測量結果可以清晰地反映出食蟹猴體溫的晝夜波動規(guī)律。

相關文獻：

· Laperrousaz et al., (2018) Lipoprotein Lipase Expression in Hypothalamus is involved in the Central Regulation of Thermogenesis and the Response to Cold Exposure

· Meyer et al., (2017) Body Temperature Measurements for Metabolic Phenotyping in Mice

· Ru?ange et al., (2020) Pre-warming before general anesthesia with iso?urane delays the onset of hypothermia in rats

應用2：動物生理學?時間生物學和睡眠研究

植入到非人靈長類腹膜的膠囊收集到的數據

在大鼠的腹腔內植入膠囊，7天后，監(jiān)測以下三組大鼠的核心體溫在麻醉前后的變化趨勢：預熱至40℃（PW40, n=17）；預熱至高于基線體溫1%（PW1%, n = 17）；無預熱（NW, n = 17）。本實驗說明，在麻醉之前給大鼠進行預熱，有助于防止麻醉劑引起的體溫過低。

相關論文：

1.van der Vinne V, Pothecary C A, Wilcox S L, et al. Continuous and non-invasive thermography of mouse skin accurately describes core body temperature patterns, but not absolute core temperature[J]. Scientific Reports, 2020, 10(1): 20680.
2.Delezie J, Gill J F, Santos G, et al. PGC-1β-expressing POMC neurons mediate the effect of leptin on thermoregulation in the mouse[J]. Scientific Reports, 2020, 10(1): 1-12.
3.van der Vinne V, Tachinardi P, Riede S J, et al. Maximising survival by shifting the daily timing of activity[J]. Ecology letters, 2019, 22(12): 2097-2102.
4.Hong S H, Hong J H, Lahey M T, et al. A low-cost mouse cage warming system provides improved intra-ischemic and post-ischemic body temperature control–application for reducing variability in experimental stroke studies[J]. Journal of neuroscience methods, 2021, 360: 109228.
5.Belloch F B, Beltrán E, Venzala E, et al. Primary role for melatonin MT2 receptors in the regulation of anhedonia and circadian temperature rhythm[J]. European Neuropsychopharmacology, 2021, 44: 51-65.
6.Tabarean I V. Neurotensin induces hypothermia by activating both neuronal neurotensin receptor 1 and astrocytic neurotensin receptor 2 in the median preoptic nucleus[J]. Neuropharmacology, 2020, 171: 108069.
7.Fenzl A, Kulterer O C, Spirk K, et al. Intact vitamin A transport is critical for cold-mediated adipose tissue browning and thermogenesis[J]. Molecular metabolism, 2020, 42: 101088.

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