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CAS | 詳詢 | 純度 | 詳詢 |
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分子量 | 詳詢 | 分子式 | 詳詢 |
供貨周期 | 現貨 | 規格 | 100T/48S |
貨號 | BC5765 | 應用領域 | 環保,化工,生物產業,農業,綜合 |
主要用途 | 蘋果酸合酶(MS)活性檢測 |
蘋果酸合酶(MS)活性檢測試劑盒說明書
微量法
貨號:BC5765
規格:100T/48S
產品組成:使用前請認真核對試劑體積與瓶內體積是否一致,有疑問請及時聯系索萊寶工作人員。
試劑名稱 | 規格 | 保存條件 |
提取液 | 液體60 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑一 | 液體15 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑二 | 液體600 μL×1支 | 2-8℃保存 |
試劑三 | -20℃保存 | |
試劑四 | 液體1.1 mL×1支 | 2-8℃保存 |
試劑五 | 液體6 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑六 | 液體1.3 mL×1支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
1、 試劑三:臨用前加入600μL蒸餾水充分溶解,未用完的試劑-20℃分裝保存4周,避免反復凍融。
產品說明:
蘋果酸合酶(Malate Synthase,EC2.3.3.9)是屬于轉移酶中酰基轉移酶的一類,主要存在于植物和微生物中。是乙醛酸循環的關鍵酶之一,在MS催化下乙醛酸與乙酰輔*A反應生成蘋果酸。
MS催化乙酰CoA和乙醛酸產生蘋果酸,同時生成輔*A,輔*A使無色的DTNB轉變成黃色的TNB,在412nm處有特征吸收峰,據此可以計算MS活性。
注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。
需自備的儀器和用品:
可見分光光度計/酶標儀、微量玻璃比色皿/96孔板、天平、低溫離心機、水浴鍋、研缽/勻漿器/細胞超聲破碎儀、冰和蒸餾水。
操作步驟:
一、樣本處理(可適當調整待測樣本量,具體比例可以參考文獻)
1. 組織:按照組織質量(g):提取液體積(mL)為1:5~10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL提取液)進行冰浴勻漿。12000g,4℃離心 10min,取上清置于冰上待測。
2. 細菌/細胞:按照細菌/細胞數量(106個):提取液體積(mL)為5~10:1的比例(建議5百萬細菌/細胞加入1mL提取液),冰浴超聲波破碎(功率200W,超聲3秒,間隔7秒,總時間5min);然后12000 g,4℃離心10min,取上清置于冰上待測。
3. 培養上清等液體:直接檢測,若有渾濁可以離心后取上清測定。
二、測定步驟
1、 可見分光光度計/酶標儀預熱30min以上,調節波長至412nm,分光光度計用蒸餾水調零。
2、 試劑一25℃預熱15min。
3、 樣本測定(在1.5mL EP管中加入下列試劑)
(1)酶促反應
試劑名稱(μL) | 對照管 | 測定管 |
試劑一 | 140 | 120 |
試劑二 | - | 10 |
試劑三 | - | 10 |
樣本 | 50 | 50 |
充分混勻,25℃反應20min | ||
試劑四 | 10 | 10 |
充分混勻,4℃ 12000g離心5min,取上清于1.5mL EP管/96孔板中。 |
(2)顯色反應
試劑名稱(μL) | 對照管 | 測定管 |
上清液 | 140 | 140 |
試劑五 | 50 | 50 |
試劑六 | 10 | 10 |
充分混勻靜置5min,測定412nm下的吸光度,分別記為A對照、A測定。計算ΔA=A測定-A對照。每個測定管需設一個對照管。 |
三、蘋果酸合酶(MS)計算公式
1. 使用微量比色皿測定:
(1) 按樣本蛋白濃度計算:
酶活定義:25℃下每mg組織蛋白在反應體系中每分鐘催化產生1nmol TNB定義為一個酶活力單位。
MS活性(U/mg prot)=ΔA÷(ε×d)×V顯色÷V上清液×V酶促÷(Cpr×V樣)÷T×F =21×ΔA÷Cpr×F
(2) 按樣本質量計算:
酶活定義:25℃下每g組織在反應體系中每分鐘催化產生1nmol TNB定義為一個酶活力單位。
MS活性(U/g 質量)=ΔA÷(ε×d)×V顯色÷V上清液×V酶促÷(W÷V提取×V樣)÷T×F =21×ΔA÷W×F
(3) 按細菌/細胞計算:
酶活定義:25℃下每106個細菌/細胞在反應體系中每分鐘催化產生1nmol TNB定義為一個酶活力單位。
MS活性(U/106 cell)=ΔA÷(ε×d)×V顯色÷V上清液×V酶促÷(N÷V提取×V樣)÷T×F =21×ΔA÷N×F
(4) 按液體體積計算:
酶活定義:25℃下每mL液體在反應體系中每分鐘催化產生1nmol TNB定義為一個酶活力單位。
MS活性(U/mL)=ΔA÷(ε×d)×V顯色÷V上清液×V酶促÷V樣÷T×F =21×ΔA÷N×F
ε:TNB摩爾消光系數,13.6×10-3mL/(nmol·cm);d:比色皿光徑,1cm;V顯色:顯色反應總體積,0.2mL;V上清液:顯色反應中上清液體積,0.14mL;V酶促:酶促反應總體積,0.2mL;V樣:反應體系中加入的樣本體
積,0.05mL;V提取:加入提取液的體積,1mL;T:反應時間,20min;Cpr:樣本蛋白濃度,mg/mL;W:樣本質量,g;N:細菌或細胞總數,以106計。
2. 使用96孔板測定:
(1) 按樣本蛋白濃度計算:
酶活定義:25℃下每mg組織蛋白在反應體系中每分鐘催化產生1nmol TNB定義為一個酶活力單位。
MS活性(U/mg prot)=ΔA÷(ε×d)×V顯色÷V上清液×V酶促÷(Cpr×V樣)÷T×F =35×ΔA÷Cpr×F
(2) 按樣本質量計算:
酶活定義:25℃下每g組織在反應體系中每分鐘催化產生1nmol TNB定義為一個酶活力單位。
MS活性(U/g 質量)=ΔA÷(ε×d)×V顯色÷V上清液×V酶促÷(W÷V提取×V樣)÷T×F =35×ΔA÷W×F
(3) 按細菌/細胞計算:
酶活定義:25℃下每106個細菌/細胞在反應體系中每分鐘催化產生1nmol TNB定義為一個酶活力單位。
MS活性(U/106 cell)=ΔA÷(ε×d)×V顯色÷V上清液×V酶促÷(N÷V提取×V樣)÷T×F =35×ΔA÷N×F
(4) 按液體體積計算:
酶活定義:25℃下每mL液體在反應體系中每分鐘催化產生1nmol TNB定義為一個酶活力單位。
MS活性(U/mL)=ΔA÷(ε×d)×V顯色÷V上清液×V酶促÷V樣÷T×F =35×ΔA÷N×F
ε:TNB摩爾消光系數,13.6×10-3mL/(nmol·cm);d:96孔板光徑,0.6cm;V顯色:顯色反應總體積,0.2mL;V上清液:加樣表上清液體積,0.14mL;V酶促:酶促反應總體積,0.2mL;V樣:反應體系中加入的樣本體積,0.05mL;V提取:加入提取液的體積,1mL;T:反應時間,20min;Cpr:樣本蛋白濃度,mg/mL;W:樣本質量,g;N:細菌或細胞總數,以106計。
注意事項:
1. 測定過程中樣本和所有試劑在冰上放置,以免變性和失活。
2. 最好兩個人同時做此實驗,一個人比色,一個人計時,以保證實驗結果的準確性。
3. 若樣本ΔA<0.01,可適當增大樣本量重新提取或增大加樣表樣本體積(可同時降低試劑一體積保證總體積不變)后測定;若樣本ΔA>1.0或A測定>1.5,可用蒸餾水稀釋上清液后測定,注意同步修改計算公式中的稀釋倍數。
實驗實例:
1、 取0.1141g霉菌加入1mL提取液進行冰浴勻漿,取上清后按照測定步驟操作,用96孔板測得ΔA=A測定-A對照=0.247-0.206=0.041,按樣本質量計算MS活性得:
MS活性(U/g 質量)=35×ΔA÷W×F =12.577 U/g 質量。
2、 取0.1169g萌芽的綠豆加入1mL提取液進行冰浴勻漿,取上清后用蒸餾水稀釋2倍后按照測定步驟操作,用96孔板測得ΔA=A測定-A對照=0.406-0.244=0.162,按樣本質量計算MS活性得:
MS活性(U/g 質量)=35×ΔA÷W×F =97.006 U/g 質量。
3、 取0.1102g芒果加入1mL提取液進行冰浴勻漿,取上清后按照測定步驟操作,用96孔板測得ΔA=A測定-A對照=0.341-0.153=0.188,按樣本質量計算MS活性得:
MS活性(U/g 質量)=35×ΔA÷W×F =97.710 U/g 質量。
參考文獻:
[1] Roucourt B, Minnebo N, Augustijns P, Hertveldt K, Volckaert G, Lavigne R. Biochemical characterization of malate synthase G of P. aeruginosa. BMC Biochem. 2009 Jun 24;10:20.
[2] Miernyk JA, Trelease RN, Choinski JS. Malate synthase activity in cotton and other ungerminated oilseeds: a survey. Plant Physiol. 1979 Jun;63(6):1068-71.
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