目錄:北京索萊寶科技有限公司>>生化檢測(cè)試劑盒-微量法>>微量法生化試劑盒>> BC5795-100T/48S蛋白質(zhì)二硫鍵含量檢測(cè)試劑盒 微量法
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更新時(shí)間:2024-04-23 14:25:14瀏覽次數(shù):761評(píng)價(jià)
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CAS | 詳詢 | 純度 | 詳詢 |
---|---|---|---|
分子量 | 詳詢 | 分子式 | 詳詢 |
供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 規(guī)格 | 100T/48S |
貨號(hào) | BC5795 | 應(yīng)用領(lǐng)域 | 環(huán)保,化工,生物產(chǎn)業(yè),農(nóng)業(yè),綜合 |
主要用途 | 蛋白質(zhì)二硫鍵含量檢測(cè) |
蛋白質(zhì)二硫鍵含量檢測(cè)試劑盒說(shuō)明書(shū)
微量法
貨號(hào):BC5795
規(guī)格:100T/48S
產(chǎn)品組成:使用前請(qǐng)認(rèn)真核對(duì)試劑體積與瓶?jī)?nèi)體積是否一致,有疑問(wèn)請(qǐng)及時(shí)聯(lián)系索萊寶工作人員。
試劑名稱 | 規(guī)格 | 保存條件 |
提取液一 | 液體40 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
提取液二 | 液體40 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑一 | 液體120 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑二 | 液體20 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑三 | 液體6 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑四 | 液體1.2 mL×1支 | 2-8℃保存 |
粉劑一 | 粉劑×1瓶 | 2-8℃保存 |
標(biāo)準(zhǔn)品 | 粉劑×1支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
1、 提取液配制:臨用前根據(jù)樣本量按照提取液一:提取液二=1mL:1 mL進(jìn)行配制,勿一次性全部混合。
2、 若試劑二有析出,可置于37℃水浴加熱至澄清透明后使用。
3、 標(biāo)準(zhǔn)品:10mg還原型谷*甘肽(GSH)。臨用前加入1.3mL蒸餾水配制成25μmol/mL,2-8℃保存4周。
4、 0.125μmol/mL標(biāo)準(zhǔn)品配制:取50μL 25μmol/mL標(biāo)準(zhǔn)品,加入950μL蒸餾水,充分混勻,配制成1.25μmol/mL的標(biāo)準(zhǔn)品;然后取100μL 1.25μmol/mL標(biāo)準(zhǔn)品,加入900μL蒸餾水,充分混勻,配制成0.125μmol/mL的標(biāo)準(zhǔn)品使用,現(xiàn)配現(xiàn)用。
產(chǎn)品說(shuō)明:
蛋白質(zhì)是一類重要的生物大分子,存在于一切生物體內(nèi),是生命的基礎(chǔ)物質(zhì)。二硫鍵是連接不同肽鏈或同一肽鏈中,兩個(gè)不同半胱氨*殘基的巰基的化學(xué)鍵。二硫鍵對(duì)蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)影響很大,在蛋白質(zhì)分子中,起著穩(wěn)定肽鏈空間結(jié)構(gòu)的作用,所以測(cè)定蛋白質(zhì)二硫鍵含量尤為重要。
還原劑會(huì)使二硫鍵裂解,裂解后的巰基會(huì)發(fā)生親核反應(yīng),即巰基與5,5’-二硫代-雙-硝基苯甲酸(DTNB)反應(yīng),生成黃色化合物,在412nm處有最大吸收峰,據(jù)此可以計(jì)算蛋白質(zhì)二硫鍵含量。
注意:實(shí)驗(yàn)之前建議選擇2-3個(gè)預(yù)期差異大的樣本做預(yù)實(shí)驗(yàn)。如果樣本吸光值不在測(cè)量范圍內(nèi)建議稀釋或者增加樣本量進(jìn)行檢測(cè)。
需自備的儀器和用品:
可見(jiàn)分光光度計(jì)/酶標(biāo)儀、微量玻璃比色皿/96孔板、天平、低溫離心機(jī)、研缽/勻漿器、丙酮(AR)、蒸餾水。
操作步驟:
一、樣本處理(可適當(dāng)調(diào)整待測(cè)樣本量,具體比例可以參考文獻(xiàn))
1. 組織:按照質(zhì)量(g):提取液體積(mL)為1:5~10的比例(建議稱取約0.1g,加入1mL提取液)加入提取液,冰浴勻漿后于4℃,3000rpm 離心10min,棄上清。在沉淀中加入2mL試劑一,攪勻后溶解沉淀,沉淀溶解液作為樣本進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。(注:(1)植物葉片等纖維含量較高的樣本,溶解沉淀后4℃ 3000rpm離心3min,取上清作為樣本進(jìn)行實(shí)驗(yàn),;(2)加入試劑一后會(huì)有大量氣泡產(chǎn)生,請(qǐng)緩慢加入,建議使用5mL的EP管)。
2. 細(xì)菌/細(xì)胞:按照細(xì)菌/細(xì)胞數(shù)量(106個(gè)):提取液體積(mL)為5~10:1的比例(建議5百萬(wàn)細(xì)菌/細(xì)胞加入1mL提取液),冰浴超聲波破碎(功率200W,超聲3秒,間隔10秒,總時(shí)間3min)后,于4℃,3000rpm 離心10min,棄上清。在沉淀中加入2mL試劑一,攪勻后溶解沉淀,沉淀溶解液作為樣本進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。(注:(1)若沉淀溶解不全,可4℃ 3000rpm離心3min,取上清作為樣本進(jìn)行實(shí)驗(yàn);(2)加入試劑一后會(huì)有大量氣泡產(chǎn)生,請(qǐng)緩慢加入,建議使用5mL的EP管)。
3. 血清/血漿、牛奶等液體:取100μL液體樣本加入0.9mL丙酮,4℃,3000rpm 離心10min,棄上清。在沉淀中加入2mL試劑一,攪勻后溶解沉淀,沉淀溶解液作為樣本進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。(注:若測(cè)定數(shù)值偏小,可改變樣本與丙酮的比例,如取0.2mL液體樣本加入0.8mL丙酮或0.3mL液體樣本加入0.7mL丙酮,注意同步修改計(jì)算公式)。
二、測(cè)定步驟
1、 可見(jiàn)分光光度計(jì)/酶標(biāo)儀預(yù)熱30min以上,調(diào)節(jié)波長(zhǎng)至412nm,分光光度計(jì)蒸餾水調(diào)零。
2、 操作表:(建議在2mL的EP管中操作)
試劑名稱(mL) | 對(duì)照管 | 測(cè)定管 | 空白管 | 標(biāo)準(zhǔn)管 | |
樣本 | 0.3 | 0.3 | - | - | |
蒸餾水 | - | - | 0.3 | - | |
標(biāo)準(zhǔn)品 | - | - | - | 0.3 | |
粉劑一 | - | 3mg | - | - | |
開(kāi)蓋反應(yīng)30min,期間每隔10min用吸頭吹打至氣泡不再產(chǎn)生,禁止扣蓋反應(yīng) | - | - | |||
提取液 | 0.18 | 0.18 | 0.18 | 0.18 | |
請(qǐng)緩慢加入提取液混勻,并用吸頭反復(fù)吹打至氣泡不再產(chǎn)生(期間會(huì)有大量氣泡產(chǎn)生,開(kāi)蓋放置) | |||||
試劑二 | 0.18 | 0.18 | 0.18 | 0.18 | |
充分混勻,4℃ 3000rpm離心10min后取上清于1.5mL EP管/96孔板中 | - | - | |||
上清液 | 0.14 | 0.14 | 0.14 | 0.14 | |
試劑三 | 0.05 | 0.05 | 0.05 | 0.05 | |
充分混勻,測(cè)定412nm下的吸光度,分別記為A1對(duì)照、A1測(cè)定。 | - | - | |||
試劑四 | 0.01 | 0.01 | 0.01 | 0.01 | |
充分混勻,室溫靜置10min后測(cè)定412nm下的吸光度,分別記為A2對(duì)照、A2測(cè)定、A空白、A標(biāo)準(zhǔn)。計(jì)算ΔA測(cè)定=(A2測(cè)定-A1測(cè)定)-(A2對(duì)照-A1對(duì)照),ΔA標(biāo)準(zhǔn)=A標(biāo)準(zhǔn)-A空白。空白管和標(biāo)準(zhǔn)管只需測(cè)1-2次。每個(gè)測(cè)定管需設(shè)一個(gè)對(duì)照管。 注:第一步測(cè)定412nm吸光度時(shí),可將反應(yīng)液全部倒入96孔板中/微量玻璃比色皿中測(cè)定,之后可直接在96孔板中/微量玻璃比色皿中加入試劑四混勻后繼續(xù)測(cè)定。 |
三、蛋白質(zhì)二硫鍵含量的計(jì)算
1. 按照樣本蛋白濃度計(jì)算:
蛋白質(zhì)二硫鍵含量(μmol/mg prot)=ΔA測(cè)定÷(ΔA標(biāo)準(zhǔn)÷C標(biāo)準(zhǔn))×V樣本÷(V樣本×Cpr)÷2×F
=0.0625× ΔA測(cè)定÷ΔA標(biāo)準(zhǔn)×Cpr×F
2. 按照樣本質(zhì)量計(jì)算:
蛋白質(zhì)二硫鍵含量(μmol/g 質(zhì)量)=ΔA測(cè)定÷(ΔA標(biāo)準(zhǔn)÷C標(biāo)準(zhǔn))×V試劑一÷W÷2×F
=0.125×ΔA測(cè)定÷ΔA標(biāo)準(zhǔn)÷W×F
3. 按照液體體積計(jì)算:
蛋白質(zhì)二硫鍵含量(μmol/mL)=ΔA測(cè)定÷(ΔA標(biāo)準(zhǔn)÷C標(biāo)準(zhǔn))×V試劑一÷V液樣÷2×F
=1.25×ΔA測(cè)定÷ΔA標(biāo)準(zhǔn)×F
4. 按照細(xì)胞/細(xì)菌數(shù)量計(jì)算:
蛋白質(zhì)二硫鍵含量(μmol /106 cell)=ΔA測(cè)定÷(ΔA標(biāo)準(zhǔn)÷C標(biāo)準(zhǔn))×V試劑一÷N÷2×F
=0.125×ΔA測(cè)定÷ΔA標(biāo)準(zhǔn)÷N×F
C標(biāo)準(zhǔn):標(biāo)準(zhǔn)管濃度,0.125μmol/mL;V樣本:加入的樣本體積,0.3mL;Cpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL,蛋白濃度需自行測(cè)定,可以使用BCA方法測(cè)定;W:樣本質(zhì)量,g;V試劑一:提取時(shí)加入試劑一體積,2mL;V液樣:提取時(shí)加入的樣本體積,0.1mL;2:一個(gè)二硫鍵裂解產(chǎn)生兩個(gè)巰基;F:稀釋倍數(shù);N:細(xì)胞/細(xì)菌總數(shù),以106計(jì)。
注意事項(xiàng):
1. 若樣本Δ測(cè)定A<0.01,可適當(dāng)增大樣本量后測(cè)定,注意同步修改空白管和標(biāo)準(zhǔn)管及計(jì)算公式;若樣本ΔA測(cè)定>1.5,可用試劑一稀釋沉淀溶解液后測(cè)定,注意同步修改計(jì)算公式中的稀釋倍數(shù)。
實(shí)驗(yàn)實(shí)例:
1、 取100μL馬血清,按照測(cè)定步驟操作,用96孔板測(cè)得ΔA測(cè)定=(A2測(cè)定-A1測(cè)定)-(A2對(duì)照-A1對(duì)照)=(0.348-0.113)-(0.047-0.045)=0.233,ΔA標(biāo)準(zhǔn)=A標(biāo)準(zhǔn)-A空白=0.417-0.105=0.312,按樣本液體體積計(jì)算蛋白質(zhì)二硫鍵含量得:
蛋白質(zhì)二硫鍵含量(μmol/mL)= 1.25×ΔA測(cè)定÷ΔA標(biāo)準(zhǔn)×F =0.933μmol/mL。
2、 取0.1036g鼠肝,按照測(cè)定步驟操作,用96孔板測(cè)得ΔA測(cè)定=(A2測(cè)定-A1測(cè)定)-(A2對(duì)照-A1對(duì)照)=(0.475-0.107)-(0.261-0.105)=0.212,ΔA標(biāo)準(zhǔn)=A標(biāo)準(zhǔn)-A空白=0.417-0.105=0.312,按樣本質(zhì)量計(jì)算蛋白質(zhì)二硫鍵含量得:
蛋白質(zhì)二硫鍵含量(μmol/g 質(zhì)量)=0.125×ΔA測(cè)定÷ΔA標(biāo)準(zhǔn)÷W×F =0.820μmol/g 質(zhì)量。
3、 取0.1078g黃豆粉,沉淀溶解液用試劑一稀釋2倍后,按照測(cè)定步驟操作,用96孔板測(cè)得ΔA測(cè)定=(A2測(cè)定-A1測(cè)定)-(A2對(duì)照-A1對(duì)照)=(0.762-0.084)-(0.123-0.070)=0.625,ΔA標(biāo)準(zhǔn)=A標(biāo)準(zhǔn)-A空白=0.417-0.105=0.312,按樣本質(zhì)量計(jì)算蛋白質(zhì)二硫鍵含量得:
蛋白質(zhì)二硫鍵含量(μmol/g 質(zhì)量)=0.125×ΔA測(cè)定÷ΔA標(biāo)準(zhǔn)÷W×F =4.646μmol/g 質(zhì)量。
相關(guān)系列產(chǎn)品:
BC1370/BC1375 總巰基含量檢測(cè)試劑盒
BC1430/BC1435 非蛋白巰基含量檢測(cè)試劑盒
BC5800/BC5805 蛋白質(zhì)總巰基含量檢測(cè)試劑盒
BC5890/BC5895 蛋白質(zhì)游離巰基含量檢測(cè)試劑盒
蛋白質(zhì)二硫鍵含量檢測(cè)試劑盒 微量法 蛋白質(zhì)二硫鍵含量檢測(cè)試劑盒 微量法
(空格分隔,最多3個(gè),單個(gè)標(biāo)簽最多10個(gè)字符)