目錄:北京索萊寶科技有限公司>>生化檢測試劑盒-微量法>>微量法生化試劑盒>> BC5695-100T/48S一氧化氮合成酶分型活性檢測試劑盒 微量法
CAS | 詳詢 | 純度 | 詳詢 |
---|---|---|---|
分子量 | 詳詢 | 分子式 | 詳詢 |
供貨周期 | 現貨 | 規格 | 100T/48S |
貨號 | BC5695 | 應用領域 | 環保,化工,生物產業,農業,綜合 |
主要用途 | 一氧化氮合成酶分型活性檢測 |
一氧化氮合成酶分型(TNOS、iNOS、cNOS)活性檢測試劑盒說明書
微量法
貨號:BC5695
規格:100T/48S
產品組成:使用前請認真核對試劑體積與瓶內體積是否一致,有疑問請及時聯系索萊寶工作人員。
試劑名稱 | 規格 | 保存條件 |
提取液一 | 液體60 mL×1瓶 | -20℃保存 |
提取液二 | 液體0.6 mL×2支 | -20℃保存 |
緩沖液 | 液體20 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑一 | 液體2.8 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑二 | 粉劑×1瓶 | -20℃保存 |
試劑三 | 液體30 μL×1支 | 2-8℃保存 |
試劑四 | 粉劑×1支 | -20℃保存 |
試劑五 | 粉劑×1支 | -20℃保存 |
試劑六 | 液體0.6 mL×1支 | 2-8℃保存 |
試劑七 | 液體1.5 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑八 | 液體30 μL×1支 | 2-8℃保存 |
顯色液A液 | 2-8℃保存 | |
顯色液B液 | 液體7 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
標準品 | 液體1 mL×1支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
1. 提取液二:為易揮發試劑,用完后盡快密封,-20℃保存;
2. 試劑二:試劑放于瓶內玻璃瓶內,臨用前加入6mL緩沖液,-20℃分裝可保存4周,避免反復凍融;
3. 試劑三工作液:臨用前根據樣本量按照試劑三:緩沖液=2μL:198μL(0.2mL,10T)的比例配制,現用現配;
4. 試劑四:臨用前加入0.6mL緩沖液,-20℃分裝可保存4周,避免反復凍融;
5. 試劑五:臨用前加入1.2mL緩沖液,-20℃分裝可保存4周,避免反復凍融;
6. 工作液:臨用前根據樣本數量按照試劑一:試劑二:試劑三工作液:試劑四=0.2mL:0.5mL:0.2mL:0.05mL(0.95mL,10T)的比例配制工作液,現用現配;
7. 試劑八工作液:臨用前根據樣本數量按照試劑八:緩沖液=5μL:225μL(0.23mL,23T)的比例配制,現用現配;
8. 顯色液:臨用前根據樣本數量按照顯色液A液:顯色液B液=1:1充分混勻,現配現用;
9. 標準品:10μmol/mL亞硝*鈉。臨用前取10μL 10μmol/mL亞硝*鈉標準液,加入990μL蒸餾水,配制成0.1μmol/mL亞硝*鈉標準液,現配現用。
產品說明:
一氧化氮合成酶(Nitric Oxide Synthase,NOS,EC 1.14.13.39,此試劑盒后寫為總NOS(TNOS))是生物體
內催化L-精*酸合成NO的一類酶,主要存在于血管平滑肌、巨噬細胞、內皮細胞、神經細胞、肝細胞、腎小球膜細胞等各種細胞中。根據其酶活性對鈣離子的依賴性不同,分為結構型NOS(constitutive NOS,cNOS)和損傷誘導型NOS(inducible NOS,iNOS),前者需要一定濃度的鈣離子方可激活,后者不依賴于外源鈣離子。
NOS催化L-精*酸、分子氧和NADPH,生成NO和NADP+,NO在水溶液中極易氧化生成NO2-和NO3-。在酸性條件下,NO2-與重氮鹽磺酸胺生成重氮化合物,進一步與萘基乙烯基二胺偶合,產物在550nm處有特征吸收峰,測定其吸光值,可以計算得到NOS活性大小。
注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。
需自備的儀器和用品:
可見分光光度計/酶標儀、低溫離心機、分析天平、恒溫水浴鍋、微量玻璃比色皿/96孔板、可調式移液槍、研缽/勻漿器/細胞超聲破碎儀、冰和蒸餾水。
操作步驟:
一、 樣本處理(可適當調整待測樣本量,具體比例可以參考文獻)
1. 組織樣本:建議稱取0.2g樣本,加入0.98mL提取液一和0.02mL提取液二,冰浴勻漿后,于4℃,12000g,離心15min,棄沉淀,取上清液置于冰上待測。
2. 細菌/細胞樣本:建議1000萬細菌/細胞加入0.98mL提取液一和0.02mL提取液二,冰浴超聲破碎(功率200W,超聲3s,間隔7s,總時間5min),然后于4℃,12000g,離心15min,棄沉淀,取上清液置于冰上待測。
3. 液體樣本:直接測定。若液體有渾濁則離心取上清測定。
注:可根據樣本量將提取液一和提取液二按照0.98mL:0.02mL的比例混勻后進行樣本前處理。
二、 測定步驟
1.可見分光光度計/酶標儀預熱30min以上,調節波長至550nm,分光光度計蒸餾水調零。
2.在1.5mL EP管按下表順序加樣:
試劑名稱(μL) | 總NOS測定管(A測定1) | iNOS測定管(A測定2) | 標準管(A標準) | 空白管(A空白) | |
樣本 | 60 | 60 | - | - | |
工作液 | 95 | 95 | - | - | |
試劑五 | 20 | - | - | - | |
試劑六 | 10 | - | - | - | |
緩沖液 | - | 30 | - | - | |
混勻,37℃反應60min,沸水浴5min(扣緊蓋子),冷卻后4℃,11000g離心10min,取全部上清于一個新EP管中。 | - | - | |||
上清液 | 全部上清液 | 全部上清液 | - | - | |
試劑七 | 10 | 10 | - | - | |
試劑八工作液 | 10 | 10 | - | - |
混勻,37℃反應30min | ||||
標準液 | - | - | 60 | - |
蒸餾水 | - | - | 145 | 205 |
顯色液 | 100 | 100 | 100 | 100 |
混勻,常溫靜置10min,取200μL反應液于96孔板中測定550nm處各管吸光值,分別記為A測定1、A測定2、A標準和A空白,計算ΔA測定1=A測定1-A空白,ΔA測定2=A測定2-A空白,ΔA標準=A標準-A空白。空白管和標準管只需測1-2次。 |
三、NOS活性計算
1. 按樣本蛋白濃度計算
單位的定義:每mg組織蛋白每分鐘催化產生1nmol NO定義為一個酶活單位。
(1)TNOS活性(U/mg prot)=(ΔA測定1÷ΔA標準×C標準)×V樣÷(Cpr×V樣)×103÷T×F
=1.67×ΔA測定1÷ΔA標準÷Cpr×F
(2)iNOS活性(U/mg prot)=(ΔA測定2÷ΔA標準×C標準)×V樣÷(Cpr×V樣)×103÷T×F
=1.67×ΔA測定2÷ΔA標準÷Cpr×F
(3)cNOS活性(U/mg prot)=總NOS活性- iNOS活性
2. 按樣本質量計算
單位的定義:每g組織每分鐘催化產生1nmol NO定義為一個酶活單位。
(1)TNOS活性(U/g 質量)=(ΔA測定1÷ΔA標準×C標準)×V樣÷(W×V樣÷V樣總)×103÷T×F
=1.67×ΔA測定1÷ΔA標準÷W×F
(2)iNOS活性(U/g 質量)=(ΔA測定2÷ΔA標準×C標準)×V樣÷(W×V樣÷V樣總)×103÷T×F
=1.67×ΔA測定2÷ΔA標準÷W×F
(3)cNOS活性(U/g 質量)=總NOS活性- iNOS活性
3. 按細菌/細胞數目計算
單位的定義:每106個細菌/細胞每分鐘催化產生1nmol NO定義為一個酶活單位。
(1)TNOS活性(U/106 cell)=(ΔA測定1÷ΔA標準×C標準)×V樣÷(N×V樣÷V樣總)×103÷T×F
=1.67×ΔA測定1÷ΔA標準÷N×F
(2)iNOS活性(U/106 cell)=(ΔA測定2÷ΔA標準×C標準)×V樣÷(N×V樣÷V樣總)×103÷T×F
=1.67×ΔA測定2÷ΔA標準÷N×F
(3)cNOS活性(U/106 cell)=總NOS活性- iNOS活性
4. 按液體體積計算
單位的定義:每mL液體每分鐘催化產生1nmol NO定義為一個酶活單位。
(1)TNOS活性(U/mL)=(ΔA測定1÷ΔA標準×C標準)×V樣÷V樣×103÷T×F=1.67×ΔA測定1÷ΔA標準×F
(2)iNOS活性(U/mL)=(ΔA測定2÷ΔA標準×C標準)×V樣÷V樣×103÷T×F=1.67×ΔA測定2÷ΔA標準×F
(3)cNOS活性(U/mL)=總NOS活性- iNOS活性
C標準:0.1μmol/mL;V樣:反應體系中加入的樣本體積,0.06mL;V樣總:加入的提取液一和提取液二的總體積,1mL;Cpr:蛋白質濃度,mg/mL;W:樣本質量,g;N:細胞或細菌數目,以106計;103:單位換算系數,
1μmol=103nmol;T:反應時間,60min;F:樣本稀釋倍數。
注意事項:
1. NOS穩定性差,易變性失活,建議使用新鮮樣本實驗,如果不立即實驗,樣本需-20℃保存。
2. 試劑二配制好后,建議根據樣本量取出所需試劑二,剩余試劑二需盡快置于-20℃保存。
3. 如果?A測定小于0.005或測定管吸光值接近空白管,可以增加樣本量或者延長第一步37℃反應時間后再進行測定;如果?A測定大于0.5,建議將樣本勻漿后的上清液用緩沖液適當稀釋后再進行測定。注意同步修改計算公式。
實驗實例:
1. 取0.2047g新鮮小鼠肝臟樣本,加入0.98mL提取液一和0.02mL提取液二進行冰浴勻漿,離心后取上清,按照測定步驟操作,用96孔板測得計算:ΔA測定1=A測定1-A空白=0.114-0.045=0.069,ΔA測定2=A測定2-A空白=0.072-0.045=0.027,ΔA標準=A標準-A空白=0.550- 0.045=0.505,按樣本質量計算得:
TNOS活性(U/g 質量)=1.67×ΔA測定1÷ΔA標準÷W = 1.115 U/g 質量
iNOS活性(U/g 質量)=1.67×ΔA測定2÷ΔA標準÷W = 0.436 U/g 質量
cNOS活性(U/g 質量)=總NOS活性- iNOS活性= 0.679 U/g 質量
2. 取60μL馬血清樣本,按照測定步驟操作,用96孔板測得計算:ΔA測定1=A測定1-A空白=0.066-0.045=0.021,ΔA測定2=A測定2-A空白=0.062-0.045=0.017,ΔA標準=A標準-A空白=0.550- 0.045=0.505,按液體體積計算得:
TNOS活性(U/mL)=1.67×ΔA測定1÷ΔA標準 = 0.069 U/mL。
iNOS活性(U/mL)=1.67×ΔA測定2÷ΔA標準 = 0.056 U/mL。
cNOS活性(U/mL)=總NOS活性- iNOS活性 = 0.013 U/mL。
參考文獻:
[1] List BM, Kl?sch B, V?lker C. et al. Characterization of bovine endothelial nitric oxide synthase as a homodimer with down-regulated uncoupled NADPH oxidase activity: tetrahydrobiopterin binding kinetics and role of haem in dimerization[J]. Biochemical Journal, 1997, 323(1): 159-165.
[2] Dawson J, Knowles RG. A microtiter-plate assay of nitric oxide synthase activity[J]. Molecular Biotechnology, 1999, 12(3): 275-279.
[3] F?rstermann U, Sessa WC. Nitric oxide synthases: regulation and function[J]. European Heart Journal, 2012, 33(7): 829-837.
[4] Kazakov A, Hall R, Jagoda P. et al. Inhibition of endothelial nitric oxide synthase induces and enhances myocardial fibrosis [J]. Cardiovascular Research, 2013, 100(2):211-221.
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