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本試劑盒采用可以特異性結合DNA的離心吸附柱和*的緩沖液系統，提取組織和細胞的基因組DNA。離心吸附柱中采用的硅基質材料為本公司*新型材料，能夠高效、專一吸附DNA，可大限度去除雜質蛋白及細胞中其他有機化合物。提取的基因組DNA段大，純度高，質量穩定可靠。使用本試劑盒提取的基因組DNA可用于各種常規操作，包括酶切、 PCR、文庫構建、Southern雜交等實驗。
操作步驟：
使用前請先在漂洗液中加入無水乙醇，加入休積請參照瓶體上的標簽。所有離心步驟均為使用臺式離心機在室溫下離心。
1、樣品的處理：
a、細胞：取1×106-1×107個懸浮培養細胞，12000rpm離心1min收集細胞，貼壁細胞先用胰蛋白酶消化處理，再用預冷的PBS吹打成細胞懸液，然后12000rpm離心1min收集細胞，盡量除去上清，加200ul溶液A，振蕩*混勻。
b、組織：組織量不宜過大，一般不要超過25mg，可以使用勻漿器勻漿，好用液氮研磨成粉末狀，再用預冷的PBS或無菌水充分懸浮，然后12000rpm離心1min收集細胞，盡量除去上清，加200ul溶液A，振蕩*混勻。
2、向懸浮液中加入20ul (10mg/ml) 的RNase A，55℃放置15min。
3、加入20ul ( 10mg /ml ) 的蛋白酶K，充分顛倒混勻，55℃水浴消化，細胞消化時間較短，組織消化時間較長，一般需要1-3個小時才能完成（鼠尾需要消化）。消化期間可顛倒離心管混勻數次，直樣品消化*為止。消化*的指標是：液體清亮及粘稠。
4、加入200ul體積溶液B，充分顛倒混勻，如出現白色沉淀，可放置于75℃ 15-30min，沉淀即會消失，不影
響后續實驗。如溶液未變清亮，說明樣品消化不*，可能導致提取的DNA量少及不純，還有可能導致堵塞吸附柱。
5、加入200ul無水乙醇，充分混勻，此時可能會出現絮狀沉淀，不影響DNA的提取，可將溶液和絮狀沉淀都加入吸附柱中。
6、12000rpm離心1min，棄廢液，將吸附柱放入收集管中。
7、向吸附柱中加入700ul漂洗液(使用前請先檢查是否已加入無水乙醇)， 12000rpm離心1min，棄廢液，將吸附柱放入收集管中。
8、向吸附柱中加入500ul漂洗液，12000rpm離心1min，棄廢液，將吸附柱放入收集管中。
9、12000rpm離心2min，將吸附柱敞口置于室溫或50℃溫箱放置數分鐘，目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，否則漂洗液中的乙醇會影響后續的實驗如酶切、PCR等。
10、將吸附柱放入一個干凈的離心管中，向吸附膜中央懸空滴加50-200ul經65℃水浴預熱的洗脫液，室溫放置5min，12000rpm離心2min。
11、可將離心所得洗脫液再加入吸附柱中，12000rpm離心2min，即可得到高質量的基因組DNA。

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注意事項:
1、試劑盒拆封后，RNase A和蛋白酶K需放置-20℃保存。
2、樣品應避免反復凍融，否則會導致提取的DNA段較小且提取量也下降。
3、如果試劑盒中的溶液出現沉淀，可在65℃水浴中重新溶解后再使用，不影響效果。
4、洗脫緩沖液的體積好不少于50ul，體積過小會影響回收效率:洗脫液的pH值對洗脫效率也有影響，若需要用水做洗脫液應保證其pH值在8.0左右(可用NaOH將水的pH值調此范圍)，pH 值低于7.0會降低洗脫效率。

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