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目錄:上海貝博生物科技有限公司>>蛋白質生物學>>蛋白提取和裂解>> 糖蛋白富集試劑盒

糖蛋白富集試劑盒
  • 糖蛋白富集試劑盒
參考價 面議
具體成交價以合同協議為準
參考價 面議
具體成交價以合同協議為準
  • 品牌 貝博生物
  • 型號
  • 廠商性質 生產商
  • 所在地
屬性

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更新時間:2024-11-24 18:50:39瀏覽次數:196評價

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產品概述 product description 貝博® BBproExtra® 糖蛋白富集試劑盒可以選擇性的對糖蛋白進行富集和純化。 本試劑盒利用糖蛋白親和純化柱與糖蛋白之間的共價配位作用實現分離純化。純化柱填料采用無定形硅膠填料,具有鍵合相穩定,鍵合率高等特點,平均粒徑為50 微米,親和層析介質可以用于各種樣本糖蛋白的分離純化富集。
保存溫度
2-8℃
注意事項
1.蛋白酶抑制劑未開蓋使用前也可以2-8℃儲存。開蓋使用后-20℃儲存。
2.蛋白酶抑制劑在2-8℃低溫時是固體狀態,從冰箱取出后恢復至室溫或37℃短時間水浴,變成液體狀態后離心至管底部再開蓋。
3.試劑拆封后請盡快使用完!
有效期
一年
檢測方法
WB,IP等
適用樣本
動物細胞/組織
產品特點
本試劑盒純化柱參數:
特點:基團脫落少,結合特異性強
配基密度:20μmol/ml
吸附載量:1mg Con A /柱
流速:300cm/h
pH范圍:3-10,在位清洗時pH范圍可到2-13
使用溫度:4℃~常溫
保存溫度:+4~8℃
產品應用
WB,IP等
儀器準備
1.離心機
2.振蕩器
3.勻漿機/勻漿器
4.渦旋混勻器
5.移液器
6.冰箱
7.冰盒
試劑準備
1.PBS緩沖液
2.蛋白定量試劑盒
耗材準備
1.離心管
2.吸頭
3.一次性手套
使用注意事項
使用注意事項:
? 旋帽離心管裝的試劑在開蓋前請短暫離心,將蓋內壁上的液體甩至管底,避免開蓋時液體灑落。
? 實驗過程中的所有試劑須預冷;所有器具須放-20℃冰箱預冷。整個過程須保持樣品處于低溫。
? 蛋白酶抑制劑儲存期間溶液如果出現沉淀,不影響使用,溶解后正常使用。
? 蛋白樣品中不可含Tris。
? 蛋白樣品不可以含有三乙醇胺類的物質。
? 蛋白樣品中可以含有二價陽離子、非離子表面活性劑。
? 上樣蛋白樣品pH值必須高于8,在8-9,蛋白濃度在0.25-0.5mg/ml。
? 洗滌細胞和組織是不能用Tris緩沖液。
? 每個新柱的載量約為1mg糖蛋白,使用過的柱子經過再生反復使用的,載量會有下降。
? 用蛋白柱進行糖蛋白富集,需要離心操作時可以將蛋白柱置于一個50ml離心管離心即可。
? 最終蛋白樣品用于2D電泳前需脫鹽。

使用方法
一、蛋白樣品的準備:
以下為由細胞和組織制備蛋白樣品的參考步驟。
其它方法得到的蛋白樣品稀釋至蛋白濃度為0.25-0.5mg/ml后直接上樣即可,確保蛋白樣品的pH值高于8,并且蛋白樣品中不含Tris和高濃度糖。
可以用試劑盒中的洗柱液、裂解液、洗滌液稀釋蛋白樣品。

細胞裂解:
1. 提取液制備:
每500μl冷的裂解液中加入2μl蛋白酶抑制劑混合物,混勻后置冰上備用。
2. 取5-10×106個細胞,在4℃,1000g條件下離心5-10分鐘,小心吸取培養基,盡可能吸干,收集細胞。
3. 用冷生理鹽水洗滌細胞兩次,每次洗滌后盡可能吸干上清。
4. 每5×106個細胞或100mg組織樣本中加入500μl冷的蛋白裂解液,混勻后,用勻漿器充分勻漿,至無明顯肉眼可見固體。
5. 將勻漿液在4℃條件下振蕩15-30分鐘。
6. 在4℃,14000g條件下離心15分鐘。
7. 快速將上清吸入另一預冷的干凈離心管,即可得到總蛋白裂解液。

二、柱平衡:
加入500μl洗柱液洗柱,重力作用下或4℃下500×g力離心1分鐘甩干吸附柱。
再次加入500μl洗柱液洗柱,重力作用下或4℃下500×g力離心1分鐘甩干吸附柱。

三、上樣:
將以上蛋白裂解液或其它待富集蛋白樣品加入吸附柱,重力作用下或4℃下500×g力離心1分鐘甩干吸附柱。

四、洗柱:
加入300μl洗滌液洗柱,重力作用下或4℃下500×g力離心1分鐘甩干吸附柱。
重復兩次。

五、洗脫:
加入300μl糖蛋白洗脫液,重力作用下或4℃下1000×g力離心1分鐘甩干吸附柱,收集洗脫液。
再次加入300μl糖蛋白洗脫液,重力作用下或4℃下1000×g力離心1分鐘甩干吸附柱,收集洗脫液,合并兩次的洗脫液,即得到糖蛋白。

六、柱保存和柱再生:
載量大幅降低后,需要再生使用的柱子,可以用1ml 0.1M Tris-HCl(pH5.0)緩沖液洗柱,然后用300μl 0.5M NaOH含2M NaCl流洗,最后用500μl 20%乙醇洗即可。然后在柱中加入20%乙醇溶液密封,置2-8℃保存。

再生使用時,加入500μl pH8.5磷酸鹽緩沖液,浸泡蛋白柱填料30分鐘,然后用2ml pH8.5磷酸鹽緩沖液洗柱即可。

常見問題分析
1.柱壓升高,液體不流穿或較難離心下來?
柱床被壓縮或柱使用時間過長或樣品固體雜質較多。
注意上樣樣品要在16000×g離心15分鐘,有條件可以用0.45um膜過濾后再上樣,不能將固體雜質上入蛋白柱。
使用次數過多后要更換蛋白柱。

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