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類器官+CRISPR 篩選:強(qiáng)大的疾病建模工具! | MedChemExpress

來源:MedChemExpress LLC   2024年04月01日 09:06  
類器官研究,近年來深受基金申請(qǐng)和高分雜志的青睞。之前,小 M 也已為大家介紹過類器官 + CRISPR 的研究。今天,小 M 針對(duì) Cell Stem Cell 發(fā)表的相關(guān)研究,并附文獻(xiàn)操作指南,助力您的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)!



結(jié)直腸癌 (Colorectal cancer, CRC) 是男性和女性中第三大<a class=的新診斷癌癥類型,其特點(diǎn)是患者之間存在顯著的遺傳和表型異質(zhì)性。雖然外顯子組測(cè)序有助于復(fù)發(fā)性遺傳病變的識(shí)別,但檢測(cè)頻率較低。

為了促進(jìn)腫瘤驅(qū)動(dòng)因素的高通量基因測(cè)試和功能鑒定,Michels BE 等人開發(fā)了一個(gè)在人類結(jié)腸類器官中進(jìn)行 CRISPR-Cas9 聯(lián)合篩選的平臺(tái),使得利用類器官進(jìn)行體外和體內(nèi)移植后腫瘤抑制基因的篩選鑒定成為可能[2]。

基于類器官的 CRISPR-Cas9 聯(lián)合篩選的平臺(tái)[2]。

首先,作者通過藥篩系統(tǒng)將攜帶 Cas9 蛋白的慢病毒載體轉(zhuǎn)入結(jié)腸類器官,建立了穩(wěn)定表達(dá) Cas9 的人結(jié)腸類器官培養(yǎng)體系。正常人結(jié)腸類器官對(duì)轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-β (TGF-β) 敏感,在培養(yǎng)體系中添加 TGF-β 可以有效殺死類器官,而敲除 TGF-B 的受體基因 (TGFBR) ,即用針對(duì) TGFBR2 的慢病毒 gRNA 轉(zhuǎn)導(dǎo)則可以挽救 TGF-β 導(dǎo)致的細(xì)胞毒性。

圖 1. 穩(wěn)定表達(dá) Cas9 的結(jié)腸類器官的組織形態(tài)學(xué)[2]。

在對(duì)照培養(yǎng)基中(左)以及在對(duì)照 gRNA(中)或 TGFBR2 gRNA 慢病毒(右)存在下進(jìn)行 TGF-β 選擇 3 周后穩(wěn)定表達(dá) Cas9 的類器官的形態(tài)學(xué)。



【參考操作】[2]:  

(一)類器官的培養(yǎng):

1.<a class=培養(yǎng)基:DMEM/F12,10 mM HEPES, 1x Glutamax, 1x penicillin/streptomycin, 2% B27, 1mM Nicotinamide, 12.5 mM N-Acetylcysteine, 500 nM A83-01, 10 mM SB202190, 50% Wnt3a, 20% R-spondin-1, 10% Noggin、50 ng/mL human EGF

2. 類器官培養(yǎng)基每 2-3 天更換一次,每周傳代一次,并在 Rho 激酶抑制劑 Y-27632 (10 mM) 的存在下培養(yǎng)在基底膜基質(zhì)膠中。

(二)類器官的轉(zhuǎn)染:
1. 通過移液多次機(jī)械分散類器官,然后進(jìn)行 Accutase 消化以獲得單細(xì)胞。
2. 洗滌后,將細(xì)胞重懸于含有 Rho 激酶抑制劑 (10 μM)Polybrene(8 μg/mL) 的培養(yǎng)基中,并進(jìn)行旋轉(zhuǎn)轉(zhuǎn)染 (500*g,1 小時(shí),32°C)
3. 37°C 孵育 3-5 小時(shí)后,將細(xì)胞接種到 Matrigel 中。轉(zhuǎn)染后 2 天開始選擇。
隨后,作者設(shè)計(jì)了針對(duì) TGF-β 通路的 6 個(gè)關(guān)鍵組分 (圖 2A) 和 94 個(gè)對(duì)照基因。每個(gè)基因都被 20 個(gè)獨(dú)立的 gRNA 靶向,整個(gè)文庫包含 2,200 個(gè) gRNA,并被轉(zhuǎn)導(dǎo)到穩(wěn)定表達(dá) Cas9 的正常人結(jié)腸類器官中 (圖 2 B)。以混合方式提取基因組DNA,并通過 NGS 分析慢病毒條形碼。針對(duì) TGFBR1 和 TGFBR2 的單個(gè) gRNA 富集程度<a class=,證實(shí)了篩選系統(tǒng)的有效。

圖 2. 使用 TGF-β 耐藥性訓(xùn)練庫進(jìn)行類器官篩選[2]。

接著,作者對(duì)異種移植類器官中的腫瘤抑制功能進(jìn)行體內(nèi)篩選。作者構(gòu)建了一種預(yù)致瘤類器官系,AK 類器官 (APC-KO/KRASGG12D),即缺失 APC 和致癌 KRASG12D 等位基因的結(jié)腸類器官。其僅在敲除 TGFBR2 (AKT 類器官) 后才顯示出生長(zhǎng)。

圖3. 腫瘤抑制功能可移植類器官模型的開發(fā)[2]

(A) 實(shí)驗(yàn)設(shè)置。致瘤前類器官系(AK:APC-KO 和 KRASG12D)和皮下移植后致瘤系(AKT:額外 TGFBR2 -KO)。(B) NSG 小鼠(n = 7 和 8 只小鼠)中移植 AK 和 AKT 類器官后腫瘤體積 (±SEM) 的測(cè)量。(C) AK(上排)和 AKT 類器官(下排)移植后的腫瘤形態(tài)。


【參考操作】
[2]:  

(一)AK(APC?/?,KRASG12D)類器官:

1. AK (APC?/?, KRASG12D) 類器官按照使用 WT 類器官的描述生成。該類器官用含有 Cas9 和 APC gRNA 的 lentiCRISPR v2 轉(zhuǎn)導(dǎo),并在連續(xù)嘌呤霉素選擇 (0.5 μg/μL),不含 Wnt、Rspondin 的情況下培養(yǎng)。

2. 分離、擴(kuò)增單個(gè)克隆,并通過 Sanger 測(cè)序證實(shí) APC 突變。

3. KRASG12D 是通過將 KRAS gRNA 與單鏈修復(fù)模板一起瞬時(shí)共轉(zhuǎn)染到質(zhì)粒 gRNA_GFP-T2 中而引入的。在不含 Wnt、Rspondin 和 EGF 且添加 0.5-1.0 mM EGFR 抑制劑的培養(yǎng)基中選擇類器官。

4. 擴(kuò)增克隆系,并通過 Sanger 測(cè)序證實(shí) KRASG12D 突變。
(二)AKT 類器官:

通過慢病毒 gRNA 將 TGFBR2-KO 引入 AK 類器官中,然后在缺乏 TGF-β 抑制劑 (A83-01) 且補(bǔ)充有 5 ng/mL 重組人 TGF-β 的培養(yǎng)基中進(jìn)行選擇,然后通過 Sanger 測(cè)序進(jìn)行確認(rèn)。


作者設(shè)計(jì)了一個(gè)泛癌 TSG gRNA 庫,其中包含先前研究中發(fā)現(xiàn)的 85 個(gè) TSG。對(duì)于每個(gè)靶標(biāo),設(shè)計(jì)了 20 個(gè)獨(dú)立的 gRNA,包括對(duì)照在內(nèi),整個(gè)文庫包含 2,600 個(gè) gRNA。轉(zhuǎn)導(dǎo)后,AK 類器官注射移植到 8-10 只 NSG 小鼠皮下圖 4)。11 至 12 周后,匯集所有腫瘤的基因組 DNA,并在 3 個(gè)實(shí)驗(yàn)重復(fù)中進(jìn)行篩選,通過檢測(cè) sgRNA 序列的富集情況來判斷發(fā)生突變的功能因子。篩選結(jié)果顯示, TGFBR2是所有三個(gè)重復(fù)中富集度<a class=的 gRNA,表明 TGF-β 在腫瘤微環(huán)境中具有主導(dǎo)的生長(zhǎng)抑制作用。提示該篩選體系可以有效的進(jìn)行腫瘤抑制因子的體內(nèi)篩選。

圖 4. 移植人體類器官中腫瘤抑制功能的體內(nèi)文庫篩選[2]。


此外,也有一些針對(duì)非功能基因的 gRNA 被富集,表明存在假陽性。作者通過在sgRNA 載體引入 UMI (unique molecular identifiers) 的方式,顯著提高了篩選的準(zhǔn)確性,降低了假陽性率。該方法體系還可以擴(kuò)展到結(jié)腸以外其它上皮細(xì)胞的篩選,將來可能用于個(gè)性化的腫瘤治療。
看了這么多,相信大家對(duì)類器官的培養(yǎng)方法有了大概的了解。MCE 現(xiàn)已推出類器官相關(guān)產(chǎn)品 55 折活動(dòng),截止到 2024.04.30,心動(dòng)不如行動(dòng),來 MCE 查詢具體的產(chǎn)品信息吧!
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MCE 類器官產(chǎn)品適用多個(gè)研究領(lǐng)域,批次間穩(wěn)定性高,類器官分化生長(zhǎng)效果好。部分產(chǎn)品如下 :




MCE 的所有產(chǎn)品僅用作科學(xué)研究或藥證申報(bào),我們不為任何個(gè)人用途提供產(chǎn)品和服務(wù)。

參考文獻(xiàn):
[1] Zhu Y. Advances in CRISPR/Cas9. Biomed Res Int. 2022 Sep 23;2022:9978571.

[2] Michels BE, et al. Pooled In Vitro and In Vivo CRISPR-Cas9 Screening Identifies Tumor Suppressors in Human Colon Organoids. Cell Stem Cell. 2020 May 7;26(5):782-792.e7.


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