使用方法
填料參數:
填料體積: 10 ml
動態吸附量: 20 mg 6×His 標簽蛋白(27 kD)/ml 介質
球形基質: 4 %交聯度瓊脂糖
平均粒徑: 90 μm (45‐165 μm)
儲存溶劑: 1× PBS(含20%乙醇)
天然條件下純化多聚標簽蛋白
緩沖液配制
用于配制緩沖液的水和化學試劑必須是高純度的,并建議使用前用0.45 μm 濾膜過濾一遍。
平衡緩沖液:50 mM NaH2PO4,300 mM NaCl,用NaOH 調pH 為8.0
洗滌緩沖液:50 mM NaH2PO4,300 mM NaCl,10 mM 咪唑,用NaOH 調pH 為8.0
洗脫緩沖液:50 mM NaH2PO4,300 mM NaCl,250 mM 咪唑,用NaOH 調pH 為8.0
組裝層析柱
1. 將Ni-Agarose Resin填料混勻后加入層析柱,室溫靜置10分鐘,待凝膠與溶液分層后,把底部的出液口打開,讓乙醇通過重力作用緩慢流出。
2. 向裝填好的柱中加入5倍柱體積的去離子水將乙醇沖洗干凈后,再用10倍柱體積的Binding Buffer平衡柱子,平衡結束后即可上樣。
可溶性蛋白的純化
以下以可溶性蛋白純化為例,使用時以實際樣本為準。
1. 收集菌體后,每100 mg菌體(濕重)加入1-5 ml細菌裂解液(每1 ml 細菌抽提試劑中已加入10 μl 蛋白酶抑制劑混合物),超聲裂解菌體。
2. 10000 rpm,4℃離心3分鐘,收集上清中的可溶性蛋白。
3. 用Binding Buffer將菌體裂解液等倍稀釋后負載上柱,流速為10倍柱體積/小時,收集流穿液。
4. 使用15倍柱體積的Binding Buffer沖洗柱子,洗去雜蛋白。
5. 使用適量Elution Buffer洗脫,收集洗脫峰。
6. 洗脫后,依次使用10倍柱體積的去離子水洗滌柱子,再用3倍柱體積的20%乙醇平衡(乙醇要將填料浸沒),封柱后2-8℃保存。
柱再生
當填料使用多次后,結合效率會有所下降(表現為流速變慢或填料失去藍綠色),可以用以下方法再生,提高填料的使用壽命和蛋白質的結合效率。
1. 使用2倍柱體積的6 M鹽酸胍沖洗后,使用3倍柱體積的去離子水沖洗。
2. 使用1倍柱體積的2% SDS沖洗。
3. 依次使用1倍柱體積的25%、50%、75%和5倍柱體積的99%乙醇沖洗,再依次使用1倍柱體積的75%、50%和25%的乙醇沖洗。
4. 使用1倍柱體積的去離子水沖洗。
5. 使用5倍柱體積含50 mM EDTA緩沖液(PH8.0)沖洗。
6. 使用3倍柱體積去離子水,3倍柱體積20%乙醇沖洗。
7. 置2-8°C保存。
8. 再次使用前,需首先使用10倍柱體積去離子水沖洗,然后使用5個柱體積的50 mM NiSO4再生,3個柱體積的Binding Buffer平衡。
9. 為了長時間的保存,介質應當2‐8 ℃保存在1× PBS(含20 % 乙醇)中。